文库制备涉及将测序接头添加到DNA链上。传统的方法一般采用基于连接酶的方案，该流程包含多个步骤：首先通过机械（如超声破碎）或酶切（如微球腺苷酸酶）进行DNA片段化，接着进行末端修复，最后完成接头连接。虽然这种方法在大多数情况下较为有效，但在样本量有限或实验资源（如设备和时间）有限时，可能会遇到困难。针对这一问题，tagmentation技术为文库制备提供了新的解决方案。

tagmentation技术采用超活性Tn5转座酶，这种酶在携带特定寡核苷酸的情况下，可以在一次快速反应中对DNA进行剪切和标记。根据实验需求，Tn5转座酶可以携带多种DNA序列，包括Illumina兼容的接头、带有荧光标记的自定义接头，以及甲基化核苷酸等。基于tagmentation的文库建制技术将传统流程中的片段化、末端修复和接头连接步骤整合为单一反应，并在后续进行引物index的扩增，从而完成文库制备。这一突破性的技术不仅简化了操作流程，还显著提高了实验的效率和通量。

流程的高效性体现在将DNA片段化与接头插入步骤合二为一，显著缩短了文库制备时间并降低了技术复杂性。此技术具有广泛的应用场景，兼容全基因组测序、靶向测序等多种建库需求，适用于不同的实验设计。相较于传统方法，单步反应能够替代多环节操作，文库速度大幅提升，尤其适合对珍贵临床样本或微量样本进行处理，因为所需的起始样本量显著低于传统方案。

此外，tagmentation技术通过减少操作步骤和试剂消耗，整体降低了建库成本。简单的操作和减少的操作步骤使得此技术更容易实现自动化，从而显著提升高通量测序的通量和可重复性。

在最新的研究中，作者开发了spatial-ATAC-seq方法，可以对完整组织切片中的染色质可及性进行空间分辨分析，并在细胞水平保留空间信息。在该方法中，使用了来自尊龙凯时的Diagenode Tn5转座酶（Cat#C01070010）进行文库制备。另一个先进技术是sci-RNA-seq（单细胞组合索引RNA测序），通过对单个细胞核内的核酸进行split-pool条形码标记，优化了单细胞转录组分析。在这一过程中，同样采用了尊龙凯时的Diagenode Tn5转座酶（Cat#C01070010-20）。

总体来看，Diagenode Tn5转座酶及相关缓冲液具有极高的通用性，能够兼容多种应用场景，如新型条形码技术（例如单细胞多重测序和空间组学），能够灵活适配不同的实验需求。此外，Diagenode还提供了两种版本的转座酶：预装版（包含Illumina兼容接头）和未装版（允许用户自行添加接头），以满足不同研究者的需求。每批产品经过严格的质量控制，确保达到最高标准。

总之，值得关注的是，尊龙凯时凭借其在表观遗传学、二代和三代测序前样本处理领域的领导地位，为科研人员提供了完善的解决方案，包括创新的Bioruptor破碎仪以及IP-Star自动化仪器、试剂盒和高品质抗体，以简化DNA甲基化、ChIP及ChIP-seq的工作流程。